Microbiologie

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Initiation à la microbiologie

Code de la Formation :

MICROBIO-01

Durée prévue :

1 jour (manipulations) + ½ jour facultatif (si interprétation au CTA)

Jours de la semaine :

Jeudi - Vendredi

Nombre de participants maximum conseillé :

16

Contenu :

  • Présentation des classes de risque pour les microorganismes

  • Présentation des sources de contamination potentielles lors des manipulations : règle des 5 M et tests de vérification

  • Travail sous atmosphère stérile : bec bunsen et flux laminaire

  • Technique de repiquage et d’isolement d’une souche

  • Préparation d’une suspension microbienne et détermination de la population par spectrophotométrie

  • Maintien de l’intégrité d’un échantillon par réalisation de dilutions successives et étalements sur boites de Pétri

  • Observation et interprétation des boites ensemencées (1/2 journée supplémentaire au CTA ou en classe sur base de l’envoi des photos des boites au professeur)

Prérequis :

Aucun spécifique

Techniques de stérilisation appliquées à la microbiologie

Code de la Formation :

MICROBIO-02

Durée prévue :

1 jour

Jours de la semaine :

Jeudi - Vendredi

Nombre de participants maximum conseillé :

12

Contenu :

  • Présentation des différentes techniques de stérilisation et des indicateurs de passage

  • Découverte du fonctionnement des hottes à flux laminaires et du travail en condition stérile

  • Utilisation d’autoclaves de laboratoire et analyse de diagrammes de stérilisation

  • Réalisation d’une solution stérile d’antibiotique par filtration

  • Etude de la température et du temps sur la destruction de micro-organismes

Prérequis :

Aucun spécifique

Identification de souches bactériennes par coloration de Gram, milieux chromogènes et tests enzymatiques

Code de la Formation :

MICROBIO-03

Durée prévue :

1 jour

Jours de la semaine :

Jeudi - Vendredi

Nombre de participants maximum conseillé :

16

Contenu :

Différentes souches bactériennes sont identifiées grâce à plusieurs méthodes d’analyse :

  • Coloration de Gram

  • Tests catalase et oxydase

  • Ensemencement sur milieux chromogènes (King B, Starch et ChromId)

Les différents résultats d’analyse sont rassemblés et les bactéries identifiées selon une clef d’identification dichotomique

Prérequis :

Savoir travailler en conditions stériles sous bec bunsen

Réalisation d’un antibiogramme, d’un E-test et d’un repiquage

Code de la Formation :

MICROBIO-04

Durée prévue :

1 jour

Jours de la semaine :

Jeudi - Vendredi

Nombre de participants maximum conseillé :

16

Contenu :

  • Préparation des boites de MHA

  • Préparation de suspensions microbiennes et standardisation

  • Réalisation d’un antibiogramme et d’un E-test

  • Interprétation théorique d’un antibiogramme (utilisation des tables ECAST) et d’un E-test

  • Observation et interprétation des résultats en classe sur base de l’envoi des photos des boites au professeur

Prérequis :

Contenu de BIOTECH-01 :

  • Savoir travailler en conditions stériles sous bec bunsen

  • Savoir réaliser une suspension bactérienne de D.O. déterminée en condition stérile

  • Savoir réaliser des dilutions


Caractérisation bactérienne par coloration de Gram, galerie API , antibiogramme et CMI

Code de la Formation :

MICROBIO-05

Durée prévue :

2 jours

Jours de la semaine :

Jeudi - Vendredi

Nombre de participants maximum conseillé :

16

Contenu :

  • Préparation de suspensions microbiennes et standardisation

  • Préparation et détermination d’une CMI

  • Réalisation d’un antibiogramme et d’un E-test

  • Réalisation d’une galerie API

  • Coloration de Gram

  • Observation et interprétation des résultats

Prérequis :

Contenu de BIOTECH-01 :

  • Savoir travailler en conditions stériles sous bec bunsen

  • Savoir réaliser une suspension bactérienne de D.O. déterminée en condition stérile

  • Savoir réaliser des dilutions


Culture de levures en bioréacteur

Code de la Formation :

MICROBIO-06

Durée prévue :

2 jours

Jours de la semaine :

Jeudi - Vendredi

Nombre de participants maximum conseillé :

10

Contenu :

  • Découverte et utilisation d’un bioréacteur de 2L

  • Suivi des paramètres physico-chimiques : température, pH, [O2], agitation

  • Population microbienne (spectrophotomètre, microscope, boites Pétri)

  • Concentration en substrat et produit

  • Température, pH, [O2], agitation)

  • Réalisation d’un pulse de substrat en cours de culture

  • Réalisation d’une droite d’étalonnage pour l’interprétation de l’évolution de la concentration en substrat

  • Lecture des dénombrements sur boites de Pétri

  • Mise en forme et analyses des données

Prérequis :

Aucun spécifique