Microbiologie

MICROBIOLOGIE

Code

Intitulé de la formation

Durée et jour(s)

MICROBIO-01

Initiation à la microbiologie

 

Nombre de participants maximum conseillé : 16

Contenu :

·        Présentation des classes de risque pour les microorganismes

·        Présentation des sources de contamination potentielles lors des manipulations : règle des 5 M et tests de vérification

·        Travail sous atmosphère stérile : bec bunsen et flux laminaire

·        Technique de repiquage et d’isolement d’une souche

·        Préparation d’une suspension microbienne et détermination de la population par spectrophotométrie

·        Maintien de l’intégrité d’un échantillon par réalisation de dilutions successives et étalements sur boites de Pétri

·        Observation et interprétation des boites ensemencées (1/2 journée supplémentaire au CTA ou en classe sur base de l’envoi des photos des boites au professeur)

 

Prérequis :

Aucun spécifique

 

  

 

 

1 jour (manipulations)

+ ½ jour facultatif (si interprétation au CTA)

 

Jeudi

Vendredi

MICROBIO-02

Techniques de stérilisation appliquées à la microbiologie

 

Nombre de participants maximum conseillé : 12

Contenu :

·        Présentation des différentes techniques de stérilisation et des indicateurs de passage

·        Découverte du fonctionnement des hottes à flux laminaires et du travail en condition stérile

·        Utilisation d’autoclaves de laboratoire et analyse de diagrammes de stérilisation

·        Réalisation d’une solution stérile d’antibiotique par filtration

·        Etude de la température et du temps sur la destruction de micro-organismes

 

Prérequis :

Aucun spécifique

 


 

 

1 jour

 

Jeudi

Vendredi

MICROBIO-03

Identification de souches bactériennes par coloration de Gram, milieux chromogènes et tests enzymatiques

 

Nombre de participants maximum conseillé : 16

Contenu :

Différentes souches bactériennes sont identifiées grâce à plusieurs méthodes d’analyse :

·        Coloration de Gram

·        Tests catalase et oxydase

·        Ensemencement sur milieux chromogènes (King B, Starch et ChromId)

Les différents résultats d’analyse sont rassemblés et les bactéries identifiées selon une clef d’identification dichotomique

 

Prérequis :

·        Savoir travailler en conditions stériles sous bec bunsen

 


 

 

 

 

1 jour

 

Jeudi

Vendredi

MICROBIO-04

Réalisation d’un antibiogramme, d’un E-test et d’un repiquage

 

Nombre de participants maximum conseillé : 16

Contenu :

·        Préparation des boites de MHA

·        Préparation de suspensions microbiennes  et standardisation

·        Réalisation d’un antibiogramme et d’un E-test

·        Interprétation théorique d’un antibiogramme (utilisation des tables ECAST) et d’un E-test

·        Observation et interprétation des résultats en classe sur base de l’envoi des photos des boites au professeur

 

Prérequis : contenu de BIOTECH-01

·        Savoir travailler en conditions stériles sous bec bunsen

·        Savoir réaliser une suspension bactérienne de D.O. déterminée en condition stérile

·        Savoir réaliser des dilutions

 


 

 

1 jour

 

Jeudi

Vendredi

MICROBIO-05

Caractérisation bactérienne par coloration de Gram, galerie API , antibiogramme et CMI

 

Nombre de participants maximum conseillé : 16

Contenu :

·        Préparation de suspensions microbiennes  et standardisation

·        Préparation et détermination d’une CMI

·        Réalisation d’un antibiogramme et d’un E-test

·        Réalisation d’une galerie API

·        Coloration de Gram

·        Observation et interprétation des résultats

 

Prérequis : contenu de BIOTECH-01

·        Savoir travailler en conditions stériles sous bec bunsen

·        Savoir réaliser une suspension bactérienne de D.O. déterminée en condition stérile

·        Savoir réaliser des dilutions

 


 

 

2 jours

 

Jeudi et vendredi

MICROBIO-06

Culture de levures en bioréacteur

 

Nombre de participants maximum conseillé : 10

Les participants suivent depuis le premier jour les paramètres d’évolution de la biomasse sur une cuve qui vient d’être inoculée, et se concentrent sur le prélèvement des échantillons et l’analyse de ceux-ci.

Contenu :

·        Découverte et utilisation d’un bioréacteur de 2L

·        Suivi des paramètres physico-chimiques : température, pH, [O2], agitation

·        Population microbienne (spectrophotomètre, microscope, boites Pétri)

·        Concentration en substrat et produit

·        Température, pH, [O2], agitation)

·        Réalisation d’un pulse de substrat en cours de culture

·        Réalisation d’une droite d’étalonnage pour l’interprétation de l’évolution de la concentration en substrat

·        Lecture des dénombrements sur boites de Pétri

·        Mise en forme et analyses des données

 

Prérequis :

Aucun spécifique

 

  

 

 

 

2 jours

 

Jeudi et vendredi